Bioquímica relatório
Os tubos de ensaio continham: 1) 0,2mL de sacarase + 0,8mL de H2O destilada + 1mL de sacarose a 1% 2) 0,5mL de sacarase + 0,5mL de H2O destilada + 1mL de sacarose a 1% 3) 1mL de sacarase + 1mL de sacarose a 1% 4) 1mL de H2O destilada + 1mL de sacarose a 1% 5) 1mL de sacarase + 1mL de H2O destilada
Esses tubos de ensaio foram incubados em banho maria a 37°C por 10 minutos. Posteriormente, a cada um dos tubos adicionou-se 1mL do reagente de Benedict, que é um reagente químico de cor azulada usado para detectar a presença de açucares redutores. Após isso, os cinco tubos foram aquecidos até a ebulição.
A sacarose não é um açúcar redutor, porém pode sofrer hidrólise originando moléculas de glicose e frutose na solução. Esses monossacarídeos são açúcares redutores e reagem com Benedict. Com isso, aparece à coloração amarelo-alaranjado na solução devido aos íons Cu2+ do reagente de Benedict que foram reduzidos a Cu+. Quanto mais sacarose hidrólisada, mais glicose e frutose presentes na reação, mais intensa será essa coloração. A partir disso, é possível compreender a mudança de tonalidade das soluções analisadas.
A coloração da solução no tubo 1 é menos intensa do que nos tubos 2 e 3, porque a concentração de sacarase nela é menor, portanto menos glicose e frutose estarão disponíveis no meio para reagir com Benedict . Ainda que tenham coloração mais intensa, em 2 a solução está mais diluída do que em 3.
A solução do tubo 4 não alterou sua tonalidade porque nele havia substrato (sacarose), mas não a enzima (sacarase) para que a reação ocorresse. E no tubo 5, também não houve porque não havia o substrato (sacarose) para que a enzima (sacarase) agisse. Esses tubos funcionam como controles para substrato e enzima.
QUESTÃO 4
Especificidade enzimática