Parasitologia
2 COLETA DA AMOSTRA É recomendado que a amostra seja colhida no laboratório, num recipiente seco, numa quantidade mínima de 100 gramas, e que seja analisada o mais rápido possível, para que não ocorra a deterioração dos parasitas mais frágeis. Quando não é possível se seguir essas especificações, as amostras deverão ser colocadas em recipientes que contenham conservantes, a fim de preservar as formas parasitárias existentes.
• Deve ser colhida sem contato com o vaso sanitário
• Utilizar recipientes limpos, isentos de água (pode conter microorganismos de vida livre urina (destrói a mobilidade e os trofozoitas ou outro material que possa contaminar pinico.
• Jornais e outros tipos de papéis também devem ser evitados afins de não se contaminar
• Transferir a amostra para o frasco coletor cedido pelo laboratório
3 MÉTODO DE HOFFMAN Sedimentação espontânea, mais indicado para a detecção de ovos pesados (A. lumbricoides inférteis, T. trichiura e S. mansoni).
2.1 PROCEDIMENTO
• Dissolver cerca de 10g de fezes em 10 ml de H²O em frasco pequeno
• Filtrar em gaze dobrada em quatro, utilizando im cálice de sedimentação
• Lavar o frasco 2X despejando a água na gaze
• Completar o cálice com água e homogenizar com bastão de vidro.
• Deixar em repouso de 2 a 24 horas.
• Com uma pipeta tampada, retirar uma amostra do fundo do vértice do cálice, destampando a pipeta após imergí-la.
• Examinar ao microscópio, adicionando uma gota da solução de lugol.
CISTO DE HELMINTOS CISTO DE GIARDIA