Extracção de dna de células vegetais

Discussão
A nossa experiência sucedeu com alguns problemas, não sendo possível observar completamente os resultados esperados, mas após observação de experiências de outros grupos, verificámos a ascensão de uma camada gelatinosa no tubo de ensaio, percebendo então a função de todos os reagentes e processos utilizados.
Para uma melhor observação do material genético, usámos o esmagamento, que provocou a rotura da membrana celular das células do Kiwi. Foi também adicionado detergente, com o intuito de ajudar a dissolver a bicamada fosfolipídica que compõe a membrana plasmática e as membranas dos organelos. A soma de cloreto de sódio à solução serviu para contribuir com iões positivos (Sódio - Na+), que neutralizam a carga negativa do DNA, impedindo a repulsão dos iões negativos. Já o álcool etílico a 5ºC foi utilizado com o intuito de precipitar, uma vez que o DNA não se dissolve no álcool, que se vai tornando mais insolúvel a temperaturas mais baixas, criando assim um choque térmico entre a solução pré-aquecida a 37ºC e o próprio álcool frio, o que levou ao aparecimento de pequenas bolhas de ar.
O facto de não se dissolver no álcool etílico e de a água ser mais densa que o DNA, faz com este se separe da solução previamente elaborada (aquosa) e se junte à solução alcoólica.
Na experiência foi também usada a fucsina básica – um corante – que adquiriu tons rosados: rosa bastante escuro quando em contacto com uma grande concentração de material genético, e tonalidades de rosas mais claros quando em contacto com concentrações de material genético menores.
Concluímos assim que o DNA é pouco solúvel, pouco denso, e que possui ligações bastante fracas, dado que se precipitava quando agitada a